流式細(xì)胞術(shù)工作原理是在細(xì)胞分子水平上通過單克隆抗體對單個細(xì)胞或其他生物粒子進(jìn)行多參數(shù)、快速的定量分析。它可以高速分析上萬個細(xì)胞,并能同時從一個細(xì)胞中測得多個參數(shù),具有速度快、精度高、準(zhǔn)確性好的優(yōu)點(diǎn),是當(dāng)代Z先進(jìn)的細(xì)胞定量分析技術(shù)之一。
有非常多種類的樣本被用于流式分析,像皮膚、骨sui穿刺液、組織活檢物、漿膜腔積液、外周血、腦脊液、骨sui活檢物、黏膜(內(nèi)窺鏡活檢物)、細(xì)針穿刺物等。免疫表型分析質(zhì)控Z困難的步驟之一可能就是是樣本的條件控制。不同的樣本在采集、保存、運(yùn)輸和制備方面都有不同的要求。所以Zxian需要觀測樣本的外觀:如果有嚴(yán)重溶血、凝聚或壞死的樣本應(yīng)該果斷棄用。
單細(xì)胞懸液的獲取:
外周血和骨sui穿刺液是天然的單細(xì)胞懸液;活檢組織常用機(jī)械分離和酶消化兩種方法。不同的實(shí)驗(yàn)需要選擇不同的方法。對于需要進(jìn)行膜抗原標(biāo)記的,不僅要獲得足夠多的單細(xì)胞懸液,還要盡量保證細(xì)胞結(jié)構(gòu)的完整性和抗原性,選擇機(jī)械法比較好。只需進(jìn)行細(xì)胞周期或DNA倍體分析的,在機(jī)械法的基礎(chǔ)上加酶消化(如胰蛋白酶、胃蛋白酶等)比較好。

抗凝劑的選擇:
外周血標(biāo)本可采用EDTA、ACD或肝素抗凝。如果采用同一份血液標(biāo)本做白細(xì)胞計(jì)數(shù)和流式分析,需要用EDTA抗凝;對于血小板分析的實(shí)驗(yàn),通常不需要用肝素抗凝。骨sui穿刺液一般使用肝素或EDTA抗凝。因?yàn)橄鄬Υ罅康腁CD會改變pH,從而可能影響骨sui細(xì)胞活性,所以一般不推薦使用ACD作骨sui穿刺液的抗凝劑。
樣本的保存:
理想狀態(tài)下,樣本需要在采集后立即進(jìn)行處理和染色。肝素抗凝的血和骨sui在室溫條件下一般可以保存至48-72小時;EDTA抗凝的外周血和骨sui在室溫條件下一般可以保存12-24小時;ACD抗凝的外周血在室溫條件下一般可以保存至72小時;對于只作胞內(nèi)染色的樣本,可以固定細(xì)胞以便長期保存。然而“固定-染色”的方法是由要分析的抗原特性和染色方式?jīng)Q定的。
去除紅細(xì)胞的方法:
紅細(xì)胞裂解法,操作簡單、速度快、并Z可能保持原始標(biāo)本的白細(xì)胞分布。Z好在染色后溶血。如果要在染色前溶血,要保證:
(1)溶血過程中抗原性不能被改變;
(2)溶血劑徹底被洗去,細(xì)胞和抗體結(jié)合的動力反應(yīng)沒有受到影響;
(3)所用的溶血劑不含固定劑,否則會影響細(xì)胞活性及表面標(biāo)記結(jié)果。密度梯度離心法,靶細(xì)胞回收較好并可能得到富集,同時去除紅細(xì)胞、碎片等。
細(xì)胞與抗體的比例:
廠家推薦的抗體用量一般是假設(shè)靶細(xì)胞數(shù)量在5*10的五次方-1*10的六次方之間。一些標(biāo)本沒有足夠的細(xì)胞,一些標(biāo)本的細(xì)胞量過大,正常濃度下的抗體相對過量或不足,可能會造成假陽性或假陰性結(jié)果。所以,每個實(shí)驗(yàn)室需要根據(jù)于廠家推薦的方法不同的方法,調(diào)整細(xì)胞與抗體用量,得到Z合適的細(xì)胞/抗體比例。
細(xì)胞活性的鑒定:
死細(xì)胞對許多抗體都有很強(qiáng)的非特異性染色,所以樣本細(xì)胞活性檢測尤為重要,特別是經(jīng)過長時間運(yùn)輸和儲存的樣本。一般有三種檢測的方法:
(1)實(shí)時的流式檢測:
利用PI、7-AAD或EMA進(jìn)行死細(xì)胞染色,而活細(xì)胞拒染這些染料。這個方法的優(yōu)勢是細(xì)胞表面標(biāo)志和活性分析能夠同時進(jìn)行。對于高度壞死的樣本特別適用。7-AADZ常用,因?yàn)樵?88nm激發(fā)下,其Zda發(fā)射光在670nm左右,適合與FITC或PE進(jìn)行多色標(biāo)記。然而隨著時間延長,7-AAD會在固定的細(xì)胞群體重新分配,死活細(xì)胞的區(qū)分變得困難。所以,對于染色并在固定后12小時以上分析的標(biāo)本,Z好用EMA。EMA與死細(xì)胞DNA穩(wěn)定的共價結(jié)合保證了長時間固定后仍能很好地區(qū)分固定前的死活狀態(tài)。
(2)手工檢測:
使用Trypanblue或其他細(xì)胞活性染料。
(3)使用專門的儀器進(jìn)行檢測。
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